Адаптивное освещение в микроскопии сверхвысокого разрешения: снижение фототоксичности - azimp-micro.ru
azimp-micro.ru
Ваш ориентир в Микроскопии
Ru En
8 (800) 551-20-97
+7 (495) 792-39-88
+7 (812) 407-10-47
Пн. – Пт.: с 9:30 до 18:00
Заказать звонок
Москва, Шаболовка, 10 info@azimp-micro.ru
Компания
  • О компании
  • Сертификаты
  • Поставщики
  • Вакансии
  • Клиенты
  • Реквизиты
Каталог
  • Микроскопы
    Микроскопы
    • Новые микроскопы
    • Б. у. микроскопы
    • Портативные микроскопы
    • Модульные микроскопы
    • Специализированные микроскопы
    • Делители изображений
  • Системы визуализации
    Системы визуализации
    • Конфокальные микроскопы
    • Мультифотонные микроскопы
    • Модульные микроскопы
    • Гиперспектральный анализ и КР спектроскопия
    • Микроскопы сверхвысокого разрешения
    • Контроль качества
    • Системы для ОКТ
  • Модификация микроскопов
    Модификация микроскопов
    • 3D микроскопия
    • FLIM микроскопия
    • STED микроскопия
    • Конфокальная микроскопия
    • Микроскопия плоскостного освещения
    • Системы локализованного освещения
    • Автоматизация микроскопа
  • Аксессуары для микроскопов
    Аксессуары для микроскопов
    • Столики для микроскопов
    • Моторизация микроскопа
    • Микроскопия живых клеток
    • Оборудование для ИКСИ
    • Адаптеры для микроскопов
    • Делители изображений
    • Колеса для фильтров
    • Расходные материалы
    • Контроль качества
  • Микрофлюидика
    Микрофлюидика
    • Системы управления потоком
    • Микроскопы
    • Системы измерения
    • Дополнительное оборудование
    • Готовые наборы
    • Контроль температуры
    • Оборудование для инжекции
    • Микрофлюидные чипы
    • 3D биопринтеры
    • Программное обеспечение
  • Электрофизиология
    Электрофизиология
    • Готовые системы
    • Манипуляторы
    • Оборудование для микроинъекций
    • Оборудование для патч-кламп
    • Пуллеры и микрокузницы
    • Системы визуализации
    • Системы сбора и обработки данных
    • Системы усиления
    • Стимуляторы
    • Физиология мышц
    • Комплектующие
    • Ещё
  • Исследования на животных
    Исследования на животных
    • In vivo визуализация и стимуляция
    • Структурированное освещение
    • Анестезия животных
    • Нейрофизиология
    • Оборудование для стереотаксиса
    • Хирургические инструменты
    • Комплектующие
  • Лабораторные принадлежности
    Лабораторные принадлежности
    • Чашки Петри
    • Слайд-камеры
    • Посуда с биоинертной поверхностью
    • Съемные силиконовые лунки
    • Культуральные вставки
    • Многолуночные планшеты
    • Посуда с сеткой на дне
    • Предметные и покровные стекла
    • Программное обеспечение
  • Аналитическое оборудование
    Аналитическое оборудование
    • Для изучения биологических объектов и сред
    • Для молекулярной и клеточной биологии
    • Пробоподготовка
    • Фотохимия
    • Хроматография
  • FLIM микроскопия
    FLIM микроскопия
    • TCSPC модули
    • FLIM системы
    • Детекторы счета фотонов
    • Пикосекундные лазеры
    • Программное обеспечение
  • Источники излучения
    Источники излучения
    • Многоволновые лазеры
    • Пикосекундные лазеры
    • Фемтосекундные лазеры
    • Ламповые источники
    • Светодиодные источники
    • Системы локализованного освещения
    • Жидкостные световоды и аксессуары
  • Научные камеры
    Научные камеры
    • CCD камеры
    • EMCCD камеры
    • HDMI камеры
    • sCMOS камеры
    • CMOS камеры
    • Делители изображений
  • Реагенты и реактивы
    Реагенты и реактивы
    • Красители для STED
    • Мечение и зонды
  • Каталог Edmund Optics
    Каталог Edmund Optics
    • Микроскопы
    • Объективы для микроскопов
    • Фильтры для микроскопии
    • Оптомеханика
    • Оптика для передачи изображения
    • Тест-объекты для микроскопов
    • Камеры
    • Окуляры
    • Увеличительные стекла
Основы микроскопии
  • Конфокальная микроскопия
    • Лазерная сканирующая микроскопия
    • Основные принципы метода
  • Мультифотонная микроскопия
    • Основы мультифотонной микроскопии
    • Лазерная сканирующая микроскопия
  • Общие принципы
    • Основные характеристики и маркировка объективов
    • Освещение по Келеру
    • Влияние конденсора микроскопа на разрешение изображения
    • Расчет увеличения микроскопа и площади образца
  • Флуоресцентная микроскопия
    • Микроскопия плоскостного освещения
    • Фильтры для флуоресцентной микроскопии
  • Оптогенетика
    • Оптогенетическая стимуляция
    • Кальциевая визуализация in vivo
Проекты
  • Микроскопия
  • Оптогенетика
  • Спектроскопия
Вебинары
  • Вебинары Abberior Instruments
    • STED микроскопия живых клеток
    • STED PAINT микроскопия
    • Адаптивная оптика в STED микроскопии
    • "Микроскоп MINFLUX - революция в флуоресцентной микроскопии" - вебинар Нобелевского лауреата
    • Демонстрация и принцип работы модуля STEDYCON
  • Вебинары Andor
    • Демистификация научных камер: основные понятия и технологии - часть 2
    • Демистификация научных камер: основные понятия и технологии - часть 1
    • Сохранение чувствительности при высокой скорости съемки в камерах sCMOS
    • Сохранение чувствительности при высокой скорости съемки в камерах EMCCD
    • Чувствительность sCMOS камер Andor с задней подсветкой для микроскопии
  • Вебинары Becker&Hickl
    • Метаболическая визуализация: одновременная регистрация FLIM изображений NAD(P)H и FAD
    • Оптимизация визуализации, аппроксамация и анализ автофлуоресцентных NAD(P)H и FAD
    • Исследование метаболизма в живых клетках рака предстательной железы: двухфотонная FLIRR микроскопия
    • Руководство для чайников по FLIM / FRET
    • Отслеживание концентрации кислорода методом гашения фосфоренценции
    • ПО SPCImage NG: извлечение информации из FLIM данных
  • Вебинары Confocal.nl
    • Микроскопия сверхвысокого разрешения при слабой мощности излучения
    • Принцип работы оптического модуля RCM для конфокальной микроскопии
    • Преодоление ограничений оптической микроскопии с помощью модуля RCM
    • Визуализация живых клеток с помощью инкубаторов Tokai Hit и модуля RCM
    • Оптический модуль RCM для конфокальной микроскопии и ПО Volocity
    • Получение разрешения 120 нм на RCM с ПО Microvolution
    • Детекторы совместимые с RCM модулем для конфокальной микроскопии
  • Вебинары Double Helix Optics
    • Технология фазовых масок Double Helix для исследования полимерных структур
    • Обзор технологии 3D визуализации Double Helix
    • Отслеживание траекторий одиночных молекул в 3D с помощью технологии Double Helix
  • Вебинары Elveflow
    • Как собрать набор для рециркуляции от Elveflow?
    • Поток и рециркуляция среды в культуре клеток на микрофлюидном чипе
  • Вебинары Thorlabs
    • Как собрать микроскоп с нуля. Часть 4
    • Как собрать микроскоп с нуля. Часть 3
    • Как собрать микроскоп с нуля. Часть 2
    • Как собрать микроскоп с нуля. Часть 1
    • Как выбрать лазерный источник и оптику для мультифотонного микроскопа
    • Как правильно подобрать камеру для микроскопа
Условия работы
  • Оформление заказа
  • Оплата заказа
  • Доставка
  • Наши преимущества
  • Услуги
Информация
  • Новости
  • Статьи
  • Вопрос ответ
  • Обзоры
  • Мероприятия
Контакты
    azimp-micro.ru
    Компания
    • О компании
    • Сертификаты
    • Поставщики
    • Вакансии
    • Клиенты
    • Реквизиты
    Каталог
    • Микроскопы
      Микроскопы
      • Новые микроскопы
      • Б. у. микроскопы
      • Портативные микроскопы
      • Модульные микроскопы
      • Специализированные микроскопы
      • Делители изображений
    • Системы визуализации
      Системы визуализации
      • Конфокальные микроскопы
      • Мультифотонные микроскопы
      • Модульные микроскопы
      • Гиперспектральный анализ и КР спектроскопия
      • Микроскопы сверхвысокого разрешения
      • Контроль качества
      • Системы для ОКТ
    • Модификация микроскопов
      Модификация микроскопов
      • 3D микроскопия
      • FLIM микроскопия
      • STED микроскопия
      • Конфокальная микроскопия
      • Микроскопия плоскостного освещения
      • Системы локализованного освещения
      • Автоматизация микроскопа
    • Аксессуары для микроскопов
      Аксессуары для микроскопов
      • Столики для микроскопов
      • Моторизация микроскопа
      • Микроскопия живых клеток
      • Оборудование для ИКСИ
      • Адаптеры для микроскопов
      • Делители изображений
      • Колеса для фильтров
      • Расходные материалы
      • Контроль качества
    • Микрофлюидика
      Микрофлюидика
      • Системы управления потоком
      • Микроскопы
      • Системы измерения
      • Дополнительное оборудование
      • Готовые наборы
      • Контроль температуры
      • Оборудование для инжекции
      • Микрофлюидные чипы
      • 3D биопринтеры
      • Программное обеспечение
    • Электрофизиология
      Электрофизиология
      • Готовые системы
      • Манипуляторы
      • Оборудование для микроинъекций
      • Оборудование для патч-кламп
      • Пуллеры и микрокузницы
      • Системы визуализации
      • Системы сбора и обработки данных
      • Системы усиления
      • Стимуляторы
      • Физиология мышц
      • Комплектующие
      • Ещё
    • Исследования на животных
      Исследования на животных
      • In vivo визуализация и стимуляция
      • Структурированное освещение
      • Анестезия животных
      • Нейрофизиология
      • Оборудование для стереотаксиса
      • Хирургические инструменты
      • Комплектующие
    • Лабораторные принадлежности
      Лабораторные принадлежности
      • Чашки Петри
      • Слайд-камеры
      • Посуда с биоинертной поверхностью
      • Съемные силиконовые лунки
      • Культуральные вставки
      • Многолуночные планшеты
      • Посуда с сеткой на дне
      • Предметные и покровные стекла
      • Программное обеспечение
    • Аналитическое оборудование
      Аналитическое оборудование
      • Для изучения биологических объектов и сред
      • Для молекулярной и клеточной биологии
      • Пробоподготовка
      • Фотохимия
      • Хроматография
    • FLIM микроскопия
      FLIM микроскопия
      • TCSPC модули
      • FLIM системы
      • Детекторы счета фотонов
      • Пикосекундные лазеры
      • Программное обеспечение
    • Источники излучения
      Источники излучения
      • Многоволновые лазеры
      • Пикосекундные лазеры
      • Фемтосекундные лазеры
      • Ламповые источники
      • Светодиодные источники
      • Системы локализованного освещения
      • Жидкостные световоды и аксессуары
    • Научные камеры
      Научные камеры
      • CCD камеры
      • EMCCD камеры
      • HDMI камеры
      • sCMOS камеры
      • CMOS камеры
      • Делители изображений
    • Реагенты и реактивы
      Реагенты и реактивы
      • Красители для STED
      • Мечение и зонды
    • Каталог Edmund Optics
      Каталог Edmund Optics
      • Микроскопы
      • Объективы для микроскопов
      • Фильтры для микроскопии
      • Оптомеханика
      • Оптика для передачи изображения
      • Тест-объекты для микроскопов
      • Камеры
      • Окуляры
      • Увеличительные стекла
    Основы микроскопии
    • Конфокальная микроскопия
      • Лазерная сканирующая микроскопия
      • Основные принципы метода
    • Мультифотонная микроскопия
      • Основы мультифотонной микроскопии
      • Лазерная сканирующая микроскопия
    • Общие принципы
      • Основные характеристики и маркировка объективов
      • Освещение по Келеру
      • Влияние конденсора микроскопа на разрешение изображения
      • Расчет увеличения микроскопа и площади образца
    • Флуоресцентная микроскопия
      • Микроскопия плоскостного освещения
      • Фильтры для флуоресцентной микроскопии
    • Оптогенетика
      • Оптогенетическая стимуляция
      • Кальциевая визуализация in vivo
    Проекты
    • Микроскопия
    • Оптогенетика
    • Спектроскопия
    Вебинары
    • Вебинары Abberior Instruments
      • STED микроскопия живых клеток
      • STED PAINT микроскопия
      • Адаптивная оптика в STED микроскопии
      • "Микроскоп MINFLUX - революция в флуоресцентной микроскопии" - вебинар Нобелевского лауреата
      • Демонстрация и принцип работы модуля STEDYCON
    • Вебинары Andor
      • Демистификация научных камер: основные понятия и технологии - часть 2
      • Демистификация научных камер: основные понятия и технологии - часть 1
      • Сохранение чувствительности при высокой скорости съемки в камерах sCMOS
      • Сохранение чувствительности при высокой скорости съемки в камерах EMCCD
      • Чувствительность sCMOS камер Andor с задней подсветкой для микроскопии
    • Вебинары Becker&Hickl
      • Метаболическая визуализация: одновременная регистрация FLIM изображений NAD(P)H и FAD
      • Оптимизация визуализации, аппроксамация и анализ автофлуоресцентных NAD(P)H и FAD
      • Исследование метаболизма в живых клетках рака предстательной железы: двухфотонная FLIRR микроскопия
      • Руководство для чайников по FLIM / FRET
      • Отслеживание концентрации кислорода методом гашения фосфоренценции
      • ПО SPCImage NG: извлечение информации из FLIM данных
    • Вебинары Confocal.nl
      • Микроскопия сверхвысокого разрешения при слабой мощности излучения
      • Принцип работы оптического модуля RCM для конфокальной микроскопии
      • Преодоление ограничений оптической микроскопии с помощью модуля RCM
      • Визуализация живых клеток с помощью инкубаторов Tokai Hit и модуля RCM
      • Оптический модуль RCM для конфокальной микроскопии и ПО Volocity
      • Получение разрешения 120 нм на RCM с ПО Microvolution
      • Детекторы совместимые с RCM модулем для конфокальной микроскопии
    • Вебинары Double Helix Optics
      • Технология фазовых масок Double Helix для исследования полимерных структур
      • Обзор технологии 3D визуализации Double Helix
      • Отслеживание траекторий одиночных молекул в 3D с помощью технологии Double Helix
    • Вебинары Elveflow
      • Как собрать набор для рециркуляции от Elveflow?
      • Поток и рециркуляция среды в культуре клеток на микрофлюидном чипе
    • Вебинары Thorlabs
      • Как собрать микроскоп с нуля. Часть 4
      • Как собрать микроскоп с нуля. Часть 3
      • Как собрать микроскоп с нуля. Часть 2
      • Как собрать микроскоп с нуля. Часть 1
      • Как выбрать лазерный источник и оптику для мультифотонного микроскопа
      • Как правильно подобрать камеру для микроскопа
    Условия работы
    • Оформление заказа
    • Оплата заказа
    • Доставка
    • Наши преимущества
    • Услуги
    Информация
    • Новости
    • Статьи
    • Вопрос ответ
    • Обзоры
    • Мероприятия
    Контакты
      azimp-micro.ru
      0
      • Компания
        • Назад
        • Компания
        • О компании
        • Сертификаты
        • Поставщики
        • Вакансии
        • Клиенты
        • Реквизиты
      • Каталог
        • Назад
        • Каталог
        • Микроскопы
          • Назад
          • Микроскопы
          • Новые микроскопы
            • Назад
            • Новые микроскопы
            • Биологические микроскопы
            • Флуоресцентные микроскопы
            • Аксессуары для микроскопов
            • Стереомикроскопы
            • Поляризационные микроскопы
            • Металлографические и промышленные микроскопы
          • Б. у. микроскопы
            • Назад
            • Б. у. микроскопы
            • Б. у. микроскопы Leica
            • Б. у. микроскопы Nikon
            • Б. у. микроскопы Olympus
            • Б. у. микроскопы Zeiss
            • Б. у. объективы
          • Портативные микроскопы
          • Модульные микроскопы
          • Специализированные микроскопы
          • Делители изображений
        • Системы визуализации
          • Назад
          • Системы визуализации
          • Конфокальные микроскопы
          • Мультифотонные микроскопы
          • Модульные микроскопы
          • Гиперспектральный анализ и КР спектроскопия
          • Микроскопы сверхвысокого разрешения
            • Назад
            • Микроскопы сверхвысокого разрешения
            • Микроскопы
            • Дополнительные модули
          • Контроль качества
          • Системы для ОКТ
        • Модификация микроскопов
          • Назад
          • Модификация микроскопов
          • 3D микроскопия
          • FLIM микроскопия
          • STED микроскопия
          • Конфокальная микроскопия
            • Назад
            • Конфокальная микроскопия
            • Конфокальная лазерная сканирующая микроскопия
            • Конфокальная микроскопия с вращающимся диском
          • Микроскопия плоскостного освещения
          • Системы локализованного освещения
          • Автоматизация микроскопа
        • Аксессуары для микроскопов
          • Назад
          • Аксессуары для микроскопов
          • Столики для микроскопов
            • Назад
            • Столики для микроскопов
            • Моторизированные столики
            • Столики с нагревом и охлаждением
          • Моторизация микроскопа
            • Назад
            • Моторизация микроскопа
            • Моторизированные столики
            • Системы фокусировки
            • Системы загрузки предметных стекол
            • Джойстики
            • Контроллеры
            • Система автоматизации микроскопа
          • Микроскопия живых клеток
            • Назад
            • Микроскопия живых клеток
            • Нагревательные столики
            • Инкубаторы
            • Газовые контроллеры
            • Оборудование для ИКСИ
            • Системы для перфузии
          • Оборудование для ИКСИ
          • Адаптеры для микроскопов
          • Делители изображений
          • Колеса для фильтров
          • Расходные материалы
            • Назад
            • Расходные материалы
            • Стекла для микроскопа
            • Флуоресцентные красители
            • Наборы для калибровки
          • Контроль качества
            • Назад
            • Контроль качества
            • Предметные стекла Abberior
            • Предметные стекла Argolight
            • Флуоресцентные тестеры GATTAquant
        • Микрофлюидика
          • Назад
          • Микрофлюидика
          • Системы управления потоком
          • Микроскопы
          • Системы измерения
          • Дополнительное оборудование
          • Готовые наборы
          • Контроль температуры
          • Оборудование для инжекции
            • Назад
            • Оборудование для инжекции
            • Готовые системы
            • Шприцевые насосы
            • Перистальтические насосы
          • Микрофлюидные чипы
            • Назад
            • Микрофлюидные чипы
            • Микрофлюидные чипы из полимеров
            • Микрофлюидные чипы из стекла
            • Органы на чипах
            • Изготовление чипов
          • 3D биопринтеры
            • Назад
            • 3D биопринтеры
            • 3D биопринтеры
            • Компоненты для биопечати
          • Программное обеспечение
        • Электрофизиология
          • Назад
          • Электрофизиология
          • Готовые системы
          • Манипуляторы
          • Оборудование для микроинъекций
          • Оборудование для патч-кламп
            • Назад
            • Оборудование для патч-кламп
            • Автоматизированные системы
            • Системы на искусственных мембpанах
            • Усилители для patch-clamp
          • Пуллеры и микрокузницы
          • Системы визуализации
            • Назад
            • Системы визуализации
            • Источники света
            • Микроскопы
            • Системы контроля освещения
          • Системы сбора и обработки данных
          • Системы усиления
          • Стимуляторы
          • Физиология мышц
          • Комплектующие
            • Назад
            • Комплектующие
            • Источники света и контроллеры
            • Оптические разветвители
            • Камера
            • Вращающиеся соединения
            • Волоконная фотометрия
            • Канюли
            • Миниатюрные микроскопы
            • Патч-корды
            • Столы и стойки
            • Электрофизиология
            • Аксессуары
        • Исследования на животных
          • Назад
          • Исследования на животных
          • In vivo визуализация и стимуляция
          • Структурированное освещение
          • Анестезия животных
            • Назад
            • Анестезия животных
            • Многофункциональные решения
            • Аппараты для анестезии
            • Аппараты ИВЛ
            • Аксессуары
            • Системы мониторинга
          • Нейрофизиология
          • Оборудование для стереотаксиса
            • Назад
            • Оборудование для стереотаксиса
            • Стереотаксис крыс
            • Стереотаксис мышей
            • Стереотаксис мышей и крыс
            • Стереотаксис крупных животных
            • Оборудование для микроинъекций
            • Аксессуары для систем стереотаксиса
          • Хирургические инструменты
            • Назад
            • Хирургические инструменты
            • Хирургические наборы для небольших животных
            • Наборы для ветеринарии
          • Комплектующие
            • Назад
            • Комплектующие
            • Источники света и контроллеры
            • Оптические разветвители
            • Камера
            • Вращающиеся соединения
            • Волоконная фотометрия
            • Канюли
            • Миниатюрные микроскопы
            • Оптогенетика
            • Патч-корды
            • Электрофизиология
            • Аксессуары
        • Лабораторные принадлежности
          • Назад
          • Лабораторные принадлежности
          • Чашки Петри
          • Слайд-камеры
            • Назад
            • Слайд-камеры
            • Камеры на покровных стеклах
            • Камеры на предметных стеклах
            • Слайд-камеры с каналами
            • Слайд-камеры с клейким основанием
            • Со структурированной поверхностью
            • Аксессуары для слайд-камер
          • Посуда с биоинертной поверхностью
          • Съемные силиконовые лунки
          • Культуральные вставки
          • Многолуночные планшеты
          • Посуда с сеткой на дне
          • Предметные и покровные стекла
          • Программное обеспечение
        • Аналитическое оборудование
          • Назад
          • Аналитическое оборудование
          • Для изучения биологических объектов и сред
            • Назад
            • Для изучения биологических объектов и сред
            • Изучение газообмена
            • Изучение фотосинтеза
            • Системы контроля среды
            • Системы фенотипирования
          • Для молекулярной и клеточной биологии
            • Назад
            • Для молекулярной и клеточной биологии
            • Гомогенизаторы высокого давления
            • Оборудование для работы с клетками
            • Холодильное оборудование
          • Пробоподготовка
            • Назад
            • Пробоподготовка
            • Материаловедение
            • Микротомы
            • Системы упаривания
            • Электронная микроскопия
          • Фотохимия
          • Хроматография
        • FLIM микроскопия
          • Назад
          • FLIM микроскопия
          • TCSPC модули
            • Назад
            • TCSPC модули
            • TCSPC платы
            • Автономные TCSPC системы
          • FLIM системы
          • Детекторы счета фотонов
          • Пикосекундные лазеры
          • Программное обеспечение
        • Источники излучения
          • Назад
          • Источники излучения
          • Многоволновые лазеры
          • Пикосекундные лазеры
          • Фемтосекундные лазеры
          • Ламповые источники
          • Светодиодные источники
            • Назад
            • Светодиодные источники
            • Светодиодные источники CoolLED
            • Светодиодные источники Excelitas
            • Светодиодные источники YODN
            • Светодиодные источники MShot
            • Встраиваемые осветители
            • Специализированные светодиоды
          • Системы локализованного освещения
          • Жидкостные световоды и аксессуары
        • Научные камеры
          • Назад
          • Научные камеры
          • CCD камеры
            • Назад
            • CCD камеры
            • CCD камеры Andor
            • CCD камеры Lumenera
            • CCD камеры Photometrics
          • EMCCD камеры
          • HDMI камеры
          • sCMOS камеры
            • Назад
            • sCMOS камеры
            • sCMOS камеры Andor
            • sCMOS камеры MShot
            • sCMOS камеры Photometrics
            • sCMOS камеры Tucsen
          • CMOS камеры
            • Назад
            • CMOS камеры
            • CMOS камеры Lumenera
            • CMOS камеры MShot
            • CMOS камеры Thorlabs
            • CMOS камеры Tucsen
          • Делители изображений
        • Реагенты и реактивы
          • Назад
          • Реагенты и реактивы
          • Красители для STED
            • Назад
            • Красители для STED
            • Флуоресцентные красители CAGE
            • Флуоресцентные красители LIVE
            • Флуоресцентные красители STAR
            • Флуоресцентные красители FLIP
            • Флуоресцентные красители FLUX
          • Мечение и зонды
            • Назад
            • Мечение и зонды
            • Мечение ДНК/кДНК
            • Мечение РНК/кРНК
        • Каталог Edmund Optics
          • Назад
          • Каталог Edmund Optics
          • Микроскопы
            • Назад
            • Микроскопы
            • Инвертированные и стереомикроскопы
            • Компактные и прямые микроскопы
            • Микроскопы Mitutoyo
            • Микроскопы Olympus
          • Объективы для микроскопов
            • Назад
            • Объективы для микроскопов
            • Объективы Mitutoyo
            • Объективы Nikon
            • Объективы Olympus
            • Объективы TECHSPEC®
            • Отражающие объективы
            • Модульные Zoom системы
            • Объективы с конечным задним фокусным расстоянием
            • Объективы с коррекцией на бесконечность
          • Фильтры для микроскопии
            • Назад
            • Фильтры для микроскопии
            • Коротковолновые фильтры
            • Нейтральные фильтры
            • Полосовые фильтры
            • Флуоресцентные фильтры
            • Длинноволновые и дихроичные фильтры
            • Колеса фильтров, фильтры в кубе
          • Оптомеханика
            • Назад
            • Оптомеханика
            • Держатели оптики
            • Оптические столы и плиты
            • Стержни и держатели стержней
            • Системы позиционирования
          • Оптика для передачи изображения
          • Тест-объекты для микроскопов
          • Камеры
          • Окуляры
          • Увеличительные стекла
      • Основы микроскопии
        • Назад
        • Основы микроскопии
        • Конфокальная микроскопия
          • Назад
          • Конфокальная микроскопия
          • Лазерная сканирующая микроскопия
          • Основные принципы метода
        • Мультифотонная микроскопия
          • Назад
          • Мультифотонная микроскопия
          • Основы мультифотонной микроскопии
          • Лазерная сканирующая микроскопия
        • Общие принципы
          • Назад
          • Общие принципы
          • Основные характеристики и маркировка объективов
          • Освещение по Келеру
          • Влияние конденсора микроскопа на разрешение изображения
          • Расчет увеличения микроскопа и площади образца
        • Флуоресцентная микроскопия
          • Назад
          • Флуоресцентная микроскопия
          • Микроскопия плоскостного освещения
          • Фильтры для флуоресцентной микроскопии
        • Оптогенетика
          • Назад
          • Оптогенетика
          • Оптогенетическая стимуляция
            • Назад
            • Оптогенетическая стимуляция
            • Что такое оптогенетика?
            • Оборудование для оптогенетики
            • Выбор источника света для оптогенетики: светодиод или лазер
            • Оптогенетика широкого поля и оптогенетика клеточного разрешения
            • Cистемы для оптогенетики клеточного разрешения
          • Кальциевая визуализация in vivo
            • Назад
            • Кальциевая визуализация in vivo
            • Что такое визуализация кальция in vivo?
            • Базовое оборудование для визуализации кальция in vivo
            • Системы для визуализации кальция in vivo
            • Интеграция оптогенетики и визуализации кальция in vivo
      • Проекты
        • Назад
        • Проекты
        • Микроскопия
        • Оптогенетика
        • Спектроскопия
      • Вебинары
        • Назад
        • Вебинары
        • Вебинары Abberior Instruments
          • Назад
          • Вебинары Abberior Instruments
          • STED микроскопия живых клеток
          • STED PAINT микроскопия
          • Адаптивная оптика в STED микроскопии
          • "Микроскоп MINFLUX - революция в флуоресцентной микроскопии" - вебинар Нобелевского лауреата
          • Демонстрация и принцип работы модуля STEDYCON
        • Вебинары Andor
          • Назад
          • Вебинары Andor
          • Демистификация научных камер: основные понятия и технологии - часть 2
          • Демистификация научных камер: основные понятия и технологии - часть 1
          • Сохранение чувствительности при высокой скорости съемки в камерах sCMOS
          • Сохранение чувствительности при высокой скорости съемки в камерах EMCCD
          • Чувствительность sCMOS камер Andor с задней подсветкой для микроскопии
        • Вебинары Becker&Hickl
          • Назад
          • Вебинары Becker&Hickl
          • Метаболическая визуализация: одновременная регистрация FLIM изображений NAD(P)H и FAD
          • Оптимизация визуализации, аппроксамация и анализ автофлуоресцентных NAD(P)H и FAD
          • Исследование метаболизма в живых клетках рака предстательной железы: двухфотонная FLIRR микроскопия
          • Руководство для чайников по FLIM / FRET
          • Отслеживание концентрации кислорода методом гашения фосфоренценции
          • ПО SPCImage NG: извлечение информации из FLIM данных
        • Вебинары Confocal.nl
          • Назад
          • Вебинары Confocal.nl
          • Микроскопия сверхвысокого разрешения при слабой мощности излучения
          • Принцип работы оптического модуля RCM для конфокальной микроскопии
          • Преодоление ограничений оптической микроскопии с помощью модуля RCM
          • Визуализация живых клеток с помощью инкубаторов Tokai Hit и модуля RCM
          • Оптический модуль RCM для конфокальной микроскопии и ПО Volocity
          • Получение разрешения 120 нм на RCM с ПО Microvolution
          • Детекторы совместимые с RCM модулем для конфокальной микроскопии
        • Вебинары Double Helix Optics
          • Назад
          • Вебинары Double Helix Optics
          • Технология фазовых масок Double Helix для исследования полимерных структур
          • Обзор технологии 3D визуализации Double Helix
          • Отслеживание траекторий одиночных молекул в 3D с помощью технологии Double Helix
        • Вебинары Elveflow
          • Назад
          • Вебинары Elveflow
          • Как собрать набор для рециркуляции от Elveflow?
          • Поток и рециркуляция среды в культуре клеток на микрофлюидном чипе
        • Вебинары Thorlabs
          • Назад
          • Вебинары Thorlabs
          • Как собрать микроскоп с нуля. Часть 4
          • Как собрать микроскоп с нуля. Часть 3
          • Как собрать микроскоп с нуля. Часть 2
          • Как собрать микроскоп с нуля. Часть 1
          • Как выбрать лазерный источник и оптику для мультифотонного микроскопа
          • Как правильно подобрать камеру для микроскопа
      • Условия работы
        • Назад
        • Условия работы
        • Оформление заказа
        • Оплата заказа
        • Доставка
        • Наши преимущества
        • Услуги
      • Информация
        • Назад
        • Информация
        • Новости
        • Статьи
        • Вопрос ответ
        • Обзоры
        • Мероприятия
      • Контакты
      • Мой кабинет
      • Корзина0
      • 8 (800) 551-20-97
        • Назад
        • Телефоны
        • 8 (800) 551-20-97
        • +7 (495) 792-39-88
        • +7 (812) 407-10-47
        • Заказать звонок
      Москва, Шаболовка, 10 info@azimp-micro.ru
      info@azimp-micro.ru
      • YouTube
      • Главная
      • Информация
      • Статьи
      • Адаптивное освещение в микроскопии сверхвысокого разрешения: снижение фототоксичности

      Адаптивное освещение в микроскопии сверхвысокого разрешения: снижение фототоксичности

      29 Октября 2021 13:32
      // Микроскопия
      Адаптивное освещение в микроскопии сверхвысокого разрешения: снижение фототоксичности

      Каждый метод, позволяющий визуализировать клетки, является более или менее инвазивным, и флуоресцентная микроскопия не исключение. Многие применения визуализации выигрывают от снижения световой дозы, обеспечиваемого адаптивным освещением.

      С момента своего появления более 20 лет назад STED-микроскопия превратилась в мощный метод наблюдения за структурами клеток. Он обеспечивает сверхразрешение на уровне, который когда-то был сферой электронной микроскопии, и сочетает в себе многие преимущества традиционной флуоресцентной микроскопии, в том числе оптические срезы, специфичность белка и совместимость с живыми клетками. Кроме того, за последние несколько лет флуоресцентные маркеры стали намного более фотостабильными, импульсные лазеры резко снизили дозировку света, а работа инструментов STED значительно упростилась. Это, а также тот факт, что необработанные изображения STED не содержат артефактов, превратили STED в универсальный метод сверхвысокого разрешения, который совместим с визуализацией живых образцов в дополнение к фиксированным препаратам.

      Тем не менее, необходимость уменьшить количество падающего на образец света при одновременном сохранении разрешения и сигнала на высоких уровнях остается всегда. Как и в любом другом методе флуоресцентной микроскопии, качество изображения в конечном итоге определяется фотостабильностью флуоресцентного маркера. Если бы молекулы красителя не обесцвечивались или не переходили в долгоживущие темные состояния, отношение сигнал / шум было бы намного выше, а разрешение ограничивалось бы только размером молекул. Однако на практике изображение всегда представляет собой компромисс между пространственным разрешением, временным разрешением и сигналом.

      Адаптивное освещение направляет свет только туда, где это необходимо, путем адаптации освещения к структуре образца. Таким образом, световая доза может быть уменьшена до 100 раз. Экономия может быть вложена в большее количество кадров, большее количество сигнала или лучшее разрешение.

      Главный прорыв в этом отношении был сделан с появлением RESCue, DyMIN и MINFIELD, триады методов, которая значительно расширила пределы таких трех параметров как пространственное разрешение, временное разрешение и уровень сигнала. Принцип, лежащий в основе этих трех методов, одинаков, и их часто обозначают термином «адаптивное освещение». Вместо постоянного сканирования на полной мощности образец освещается только в тех местах, где свет может внести положительный вклад в изображение. Другими словами, освещение адаптируется к основной структуре образца. Типичный образец имеет разреженную структуру. Следовательно, соответствующее изображение состоит в основном из фона (расфокусированный свет, автофлуоресценция) или просто темных участков. Имеет смысл не освещать эти области и защитить образец от большей части световой дозы. Кроме того, пропуск темных областей также полезен для участков, которые действительно содержат сигнал, по двум основным причинам. Во-первых, луч возбуждения представляет собой двойной конус (рис. 1). Вдали от фокальной плоскости он становится менее интенсивным, но также и более широким, так что общая интенсивность сохраняется. Поскольку луч возбуждения сканирует образец, фактический фокус попадает в каждую точку только один раз, но конусы постоянно перекрываются, и их интенсивности, хотя и небольшие, в сумме дают ту же интенсивность, что и в фокусе (эффект такой же, как и в фотографии, на которой не в фокусе фон размыт, но не темен). Следовательно, предотвращение излишнего освещения областей, находящихся в фокусе, избавляет области вне фокуса от большого количества света, который в противном случае вызвал бы фотообесцвечивание и фотоповреждение. Это имеет наибольший эффект при записи трехмерных стеков, и это относится как к конфокальной, так и к STED-визуализации.

      Рис. 1 Небольшие интенсивности вне фокуса складываются во время сканирования

      Вторая причина не освещать темные области заключается в том, что фокус лазерного луча - это не бесконечно малая точка, а объем, известный как функция рассеяния точки (ФРТ). В STED микроскопии разница между разрешением и размером ФРТ может быть довольно большой: в то время как микроскопы STED достигают разрешения менее 30 нм даже без адаптивного освещения, сам STED ФРТ по-прежнему ограничен дифракцией и имеет диаметр примерно в десять раз больше этого размера. Следовательно, освещенная область может быть в сто раз больше, чем область, из которой фактически собирается флуоресценция. Это означает, что много раз во время сканирования, когда записывается пустая область, возбуждение и, в частности, STED ФРТ достигают соседних областей, которые содержат флуоресцентные маркеры (рис. 2 A). Эти маркеры подвергаются воздействию высокой интенсивности, но без необходимости, потому что никакие полезные фотоны не могут быть собраны из пустой области. По этим причинам рекомендуется не освещать пустые области в образце, но остается вопрос, как определить, где эти области находятся, не освещая их в первую очередь.

      Рис. 2 Дозы света (смоделированные) при визуализации внутренних структур гипотетической клетки (A). Области полного освещения (светло-серый) и только зондирующего освещения (темно-серый) для REScue (B) и DyMIN (C). D: Световая доза при сканировании с постоянной полной мощностью STED, нормализованная до 100%. E: В этом примере дозировка света снижена на 94% и 98%, соответственно, при визуализации с помощью RESCue (E) и DyMIN (F).

      Конфокальное зондирование. Метод RESCue

      Один из вариантов - сделать быстрое конфокальное изображение с низким уровнем сигнала и повреждениями, установить пороговое значение и использовать его в качестве маски во время финального сканирования, чтобы определить, когда гасить возбуждающий и STED-лазер. Однако потенциальная проблема этого подхода заключается в том, что образец может дрейфовать и / или живой образец может перемещаться между этапом исследования и окончательным сканированием.

      Лучше всего зондировать образец точка за точкой, пока идет регистрация данных точка за точкой (рис. 2). Этот подходит приводит к следующей схеме: переход к следующей позиции сканирования, включение возбуждающего луча, ожидание в течение короткого промежутка времени и проверка того, прибыло ли определенное количество флуоресцентных фотонов. Если результат положительный, можно предположить, что флуоресцентные маркеры присутствуют в этой конкретной позиции сканирования, и можно продолжать возбуждать и собирать фотоны до тех пор, пока не будет достигнут желаемый уровень сигнала (конечно, можно также включить STED.) Если на первом этапе зондирования не зарегистрировано ни одного фотона или зарегистрировано только несколько фотонов, эта область, вероятно, пуста, и все лучи выключают на оставшееся время регистрации пикселя. Если образец, скажем, на 80% разрежен, такой метод автоматически и немедленно приводит к тому, что на образец и его флуоресцентные молекулы, которые в настоящее время не в фокусе, попадает на 80% меньше света. Для объемных образцов это может быть решающим различием между хорошим изображением и отсутствием изображения вообще. Кроме того, маркеры в фокусе по второй описанной выше причине дают больше сигнала.

      Рис.3 Увеличение разрешения с помощью адаптивного освещения. Два белка (комплекс ядерных пор (NPC) зеленого цвета и ламина красного цвета) вокруг ядерной мембраны были помечены иммуномечением с использованием Abberior STAR Orange и STAR RED. Показаны необработанные данные. Разрешение для NPC изотропно и составляет около 60 нм, это самый высокий показатель разрешения для 3D-STED с обычными флуорофорами, за исключением MINFIELD 3D-STED.

      Представленная схема - конфокальное зондирование, за которым следует решение, продолжать визуализацию или нет - известна как RESCue. Для этого требуется быстрое управление освещением в масштабе времени менее микросекунды, обычно обеспечиваемое акустооптическим устройством, и интеллектуальная схема принятия решений, которая надежно отделяет фон от полезного сигнала. Примечательно, что после того, как решение было положительным, визуализация выполняется точно так же, как и раньше, что делает RESCue полностью количественным методом.

      Всегда смотрите на светлую сторону флуорофора

      Как уже говорилось, размер ФРТ STED обычно составляет несколько сотен нанометров. Когда сканирование приближается к области, содержащей флуоресцентные маркеры, ФРТ STED начинает перекрываться с ним задолго до того, как фактически обнаруживается флуоресценция, которая может исходить только из центра бублика. Метод RESCue помогает справиться с этим, но сам этап конфокального зондирования ограничен дифракцией. Следовательно, когда сканирование происходит в пределах ~ 100 нм от флуоресцентной молекулы, конфокальное зондирование приводит к положительному решению о проведении визуализации и освещение устанавливается на полную, хотя следующий этап STED не дает флуоресценции еще на 70-80 нм по направлению к молекуле. Вскоре после публикации метода RESCue стало ясно, что его можно улучшить, если после начального этапа конфокального зондирования использовать STED для дальнейшего зондирования, теперь уже с субдифракционным разрешением (рис. 2). Это идея, которая лежит в основе метода DyMIN. Фактически, DyMIN использует мульти-STED-зондирование с разной интенсивностью STED - каждый раз, когда сканирование приближается к молекуле, интенсивность STED, используемая на этапе зондирования, немного увеличивается, давая больше информации без применения большей мощности, чем это  необходимо. С помощью этого метода можно точно определить границу между пустыми областями и областями, содержащими флуоресцентные маркеры. Что еще более важно, поскольку соотношение между разрешением и мощностью STED следует закону квадратного корня, при низких мощностях STED небольшое увеличение уже дает огромную прибавку в разрешении. Таким образом, зондирование STED-лучом очень малой мощности может значительно улучшить процесс зондирования. Это, а также тот факт, что слишком много шагов зондирования STED увеличивают продолжительность сканирования и совокупную мощность STED, означает, что на практике метод, когда используется схема: один шаг конфокального зондирования, за которым следуют 2-3 шага зондирования STED, является наиболее предпочтительным.

      Рис.4 Увеличение сигнала с адаптивным освещением. Слева: конфокальная и стандартная STED-визуализация кластеризации гефирина в ингибирующих синапсах нейронов гиппокампа крыс. Справа: тот же образец, зарегистрированый с помощью DyMIN STED. При прочих равных параметрах сигнал увеличивается в десять раз, уменьшая шум и делая субструктуры четко видимыми, которые невозможно различить с помощью обычного STED метода.

      С помощью метода DyMIN дозы света, попадающие на флуоресцентные маркеры и образец, могут быть снижены в 10–100 раз (рис. 2). Это означает, что из одной и той же области можно записать в сто раз больше изображений (рис. 5), сигнал может быть увеличен во много раз (рис. 4) или разрешение может быть улучшено примерно в два-три раза (рис. 3). При этом совокупность таких параметров, как скорость, разрешение и сигнал, которые оператор пытается подобрать для регистрации оптимального изображения, теперь имеют значительно большие пределы и приводят к изображениям, недоступным с помощью обычного STED.

      Следует отметить, что DyMIN, в отличие от RESCue, накладывает различные интенсивности света STED на структуры, в зависимости от формы других структур в его окрестностях. Это связано с тем, что с RESCue решение о после зондирования является двоичным, и как только структура была зарегистрирована, она визуализируется с полным освещением. Напротив, с DyMIN для каждого шага сканирования возможно разное количество шагов зондирования, пока решение не станет положительным. Тем не менее, выигрыш, который может быть достигнут с помощью DyMIN, настолько высок, и во многих случаях изображение, где фотообесцвечивание варьируется по образцу, лучше, чем полное отсутствие изображения.

      Рис.5 Увеличенное количество кадров для визуализации живых клеток с адаптивным освещением. Гораздо более низкая доза света и слабое фотообесцвечивание облегчают получение изображений живых клеток в режиме таймлапса. 120 изображений одной и той же области образца записываются с разрешением 50 нм без значительного обесцвечивания или стресса для образца. Обратите внимание на растущие волокна тубулина. Вставка показывает снижение световой дозы по сравнению с CW-STED. 

      На рис. 6 показан нейронный белок PSD95, изображение которого получено с помощью STED с адаптивным освещением и различных препаратов. В (A) фиксированный и иммуноокрашенный срез мозга был получен с высоким сигналом и разрешением. На (C) был получен срез живого мозга с адаптивным освещением STED (красный) и конфокальным контрастным окрашиванием нейронов (зеленый), что дает представление об ориентации PSD95 и субструктуры in vitro.

      Минимальная интенсивность для максимального разрешения

      Дальнейшее снижение световой дозы может быть достигнуто с помощью немного другой схемы, называемой MINFIELD. Здесь идея состоит в том, чтобы ограничить сканирование только небольшой областью, чтобы не подвергать представляющие интерес флуорофоры воздействию высокоинтенсивного пика STED-бублика. Это означает, что поле зрения должно быть меньше, чем центральная область от нуля до низкой интенсивности STED-бублика, но эта область подвергается только низкой интенсивности и может быть записана с чрезвычайно высоким разрешением, поскольку в значительной степени можно избежать фотообесцвечивания. При использовании MINFIELD было продемонстрировано снижение обесцвечивания до 100 раз, и разрешение около 15 нм, наивысшее разрешение STED было продемонстрировано при использовании обычных флуорофоров. MINFIELD используется для получения максимального разрешения и сигнала от структур размером порядка нескольких сотен нанометров и меньше, таких как вирусы, везикулы, комплексы ядерных пор.

      Рис.6 Белок PSD95, изображение которого получено при адаптивном освещении. (A) Фиксированный кластер PSD95 с иммунной меткой. Размер одного изображения составляет 800 нм x 800 нм. (B) Профиль линии, показывающий разрешение профиля, выделенного в (A). (C) Изображение среза мозга живой мыши кластеров PSD95 (красный), полученное с помощью STED с адаптивным освещением и конфокальной визуализацией с контрастной окраской нейронов (зеленый).

      Выводы

      При адаптивном освещении свет попадает на образец только там, где это необходимо. Поэтому доступ к структурной информации осуществляется по точкам с использованием конфокального и STED зондирования с низкой интенсивностью, чтобы решить, где стоит производить запись данных при полном освещении. Таким образом, воздействие света на образец значительно снижается, что облегчает эксперименты с живыми клетками, получение изображений с высоким разрешением и получение высокого уровня сигнала. 

      Какой из трех методов адаптивного освещения лучше всего подходит для данного образца, зависит от ряда факторов. Очевидно, что MINFIELD является предпочтительным инструментом для получения изображений STED с очень высоким разрешением и высоким уровнем сигнала структур размером в несколько сотен нанометров. Если структуры становятся больше, можно применить RESCue или DyMIN. Как правило, поскольку RESCue использует только один шаг зондирования, он сохраняет скорость визуализации и лучше всего подходит для быстрой записи и / или экспериментов с живыми клетками.

      Разрешение, достигаемое с помощью DyMIN, лучше, однако изображение DyMIN занимает немного больше времени из-за дополнительных шагов зондирования и, следовательно, больше подходит для фиксированных образцов. Тем не менее, DyMIN применялся и к срезам живого мозга (рис. 6C). 

      Обратите внимание, что концепция адаптивного освещения может быть обобщена. Это не обязательно должен быть этап конфокального зондирования, за которым следует STED. Schlötel и др. использовали RESCue с большим эффектом для визуализации малярийных паразитов, которые накапливают отложения железа на стадии жизненного цикла, протекающей в эритроцитах. Эти частицы гемозоина обладают высокой отражающей способностью, что затрудняет их изучение с помощью конфокальной микроскопии и, в частности, STED-микроскопии. Однако использование низкоинтенсивного конфокального зондирования для локализации и последующего исключения гемозоина во время сканирования позволяет получать многоцветные изображения паразитов малярии на стадии крови с разрешением до 35 нм.


      Теги
      Снижение фототоксичности Визуализация живых клеток Адаптивное освещение Микроскопия сверхвысокого разрешения

      • Prev
      • Next
      Товары
      • Изображение RESCue STED - метод визуализации со сниженной дозой облучения образца
        RESCue STED - метод визуализации со сниженной дозой облучения образца
        Арт. RESCue STED
        В корзину В корзине
      • Изображение MINFIELD STED – STED визуализация с разрешением < 20 нм
        MINFIELD STED – STED визуализация с разрешением < 20 нм
        Арт. MINFIELD STED
        В корзину В корзине
      • Изображение DyMIN STED – STED визуализация с разрешением < 25 нм
        DyMIN STED – STED визуализация с разрешением < 25 нм
        Арт. DyMIN STED
        В корзину В корзине
      • Изображение Адаптивное освещение
        Адаптивное освещение
        Арт. Adaptive Illumination
        В корзину В корзине
      • Комментарии
      Загрузка комментариев...

      Назад к списку Следующая статья
      Категории
      • Аналитическое оборудование1
      • Апгрейды для микроскопов9
      • Источники излучения1
      • Камеры для микроскопов7
      • Лабораторная посуда8
      • Микроскопия68
      • Микрофлюидика49
      • ОКТ3
      • Оптогенетика3
      • Счет фотонов8
      Это интересно
      • Разарретирование (Uncaging) клетки с использованием двухфотонного микроскопа FEMTOSmart
        Разарретирование (Uncaging) клетки с использованием двухфотонного микроскопа FEMTOSmart
        24 Марта 2023
      • Оптогенетика и фотостимуляция с помощью микроскопа FEMTOSmart
        Оптогенетика и фотостимуляция с помощью микроскопа FEMTOSmart
        20 Марта 2023
      • Трехфотонная визуализация с помощью микроскопа FEMTOSmart
        Трехфотонная визуализация с помощью микроскопа FEMTOSmart
        17 Марта 2023
      • Визуализация дендритов с помощью двухфотонного микроскопа FEMTOSmart
        Визуализация дендритов с помощью двухфотонного микроскопа FEMTOSmart
        16 Марта 2023
      • Сканирование нейронных сетей с помощью двухфотонного лазерного 2D сканирующего микроскопа FEMTOSmart
        Сканирование нейронных сетей с помощью двухфотонного лазерного 2D сканирующего микроскопа FEMTOSmart
        15 Марта 2023
      • Двухфотонный лазерный 3D сканирующий микроскоп для оптогенетики
        Двухфотонный лазерный 3D сканирующий микроскоп для оптогенетики
        13 Марта 2023
      • Изучение поведенческих характеристик с помощью двухфотонного микроскопа FEMTO3D Atlas
        Изучение поведенческих характеристик с помощью двухфотонного микроскопа FEMTO3D Atlas
        10 Марта 2023
      • Сканирование дендритов с помощью микроскопа FEMTO3D Atlas
        Сканирование дендритов с помощью микроскопа FEMTO3D Atlas
        9 Марта 2023
      • 3D визуализация нейронных сетей с помощью микроскопа FEMTO3D Atlas
        3D визуализация нейронных сетей с помощью микроскопа FEMTO3D Atlas
        1 Марта 2023
      • Живая визуализация кальция для мониторинга активации Т-клеток с использованием Inscoper liveRATIO
        Живая визуализация кальция для мониторинга активации Т-клеток с использованием Inscoper liveRATIO
        13 Февраля 2023
      • Изучение динамики органелл в живых клетках с помощью лазеров Oxxius и системы Inscoper scanFRAP
        Изучение динамики органелл в живых клетках с помощью лазеров Oxxius и системы Inscoper scanFRAP
        9 Февраля 2023
      • Модернизация и оптимизация кастомизированных систем с Inscoper Imaging Solution
        Модернизация и оптимизация кастомизированных систем с Inscoper Imaging Solution
        7 Февраля 2023
      • Сравнение MINFLUX, PALM, STED и STORM методов сверхвысокого разрешения
        Сравнение MINFLUX, PALM, STED и STORM методов сверхвысокого разрешения
        30 Декабря 2022
      • Как пончик изменил мир
        Как пончик изменил мир
        29 Декабря 2022
      • STEDYCON: простое решение для микроскопии сверхвысокого разрешения размером с обувную коробку
        STEDYCON: простое решение для микроскопии сверхвысокого разрешения размером с обувную коробку
        28 Декабря 2022
      • Как измерить разрешение? Часть 2
        Как измерить разрешение? Часть 2
        27 Декабря 2022
      • Что такое разрешение? Часть 1
        Что такое разрешение? Часть 1
        22 Декабря 2022
      • Как функция рассеяния точки (PSF) и количество фотонов влияют на разрешение
        Как функция рассеяния точки (PSF) и количество фотонов влияют на разрешение
        16 Декабря 2022
      • Микрооблучение с использованием Inscoper scanFRAP для мониторинга репарации ДНК в режиме реального времени
        Микрооблучение с использованием Inscoper scanFRAP для мониторинга репарации ДНК в режиме реального времени
        1 Апреля 2022
      • Фототермическая терапия золотыми наностержнями
        Фототермическая терапия золотыми наностержнями
        1 Апреля 2022
      Облако тегов
      dSTORM FLIM PALM STED TCSPC Thorlabs Адаптивное освещение Аксессуары Апгрейд микроскопов Визуализация живых клеток Двухцветная визуализация Кальциевая визуализация Камеры для микроскопов Комплектующие микроскопов Контроль качества флуоресцентных микроскопов Конфокальная микроскопия Лабораторная посуда Лазеры Микроскопия плоскостного освещения Микроскопия сверхвысокого разрешения Многоволновые лазеры ОКТ Оптогенетика Сверхвысокое разрешение Снижение фототоксичности Счет фотонов Флуоресцентная микроскопия флуорофоры
      Оптимальный выбор
      Оптимальный выбор Широкий ассортимент и подбор аналогов
      Привлекательные цены
      Привлекательные цены Всегда выгодные предложения
      Товар дня!
      Слайд-камера µ-Slide, 8 лунок
      Слайд-камера µ-Slide, 8 лунок
      Арт. 80826 / 80826-90 / 80821 / 80822 / 80824 / 80829
      В корзину В корзине
      Подписывайтесь на новости и акции:
      Компания
      О компании
      Сертификаты
      Поставщики
      Вакансии
      Клиенты
      Реквизиты
      Каталог
      Микроскопы
      Системы визуализации
      Модификация микроскопов
      Аксессуары для микроскопов
      Микрофлюидика
      Электрофизиология
      Исследования на животных
      Лабораторные принадлежности
      Аналитическое оборудование
      FLIM микроскопия
      Источники излучения
      Научные камеры
      Реагенты и реактивы
      Каталог Edmund Optics
      Основы микроскопии
      Конфокальная микроскопия
      Мультифотонная микроскопия
      Общие принципы
      Флуоресцентная микроскопия
      Оптогенетика
      Проекты
      Микроскопия
      Оптогенетика
      Наши контакты

      8 (800) 551-20-97
      +7 (495) 792-39-88
      +7 (812) 407-10-47
      Пн. – Пт.: с 9:30 до 18:00
      Москва, Шаболовка, 10 info@azimp-micro.ru
      info@azimp-micro.ru
      © 2023 Все права защищены.
      0

      Корзина

      Ваша корзина пуста

      Исправить это просто: выберите в каталоге интересующий товар и нажмите кнопку «В корзину»
      В каталог